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柱式植物葉綠體提取試劑盒(微量樣品)

柱式植物葉綠體提取試劑盒(微量樣品)

產(chǎn)品編號:RTU5004

產(chǎn)品規(guī)格:50次

數(shù)量
價格 ¥500

 柱式植物葉綠體提取試劑盒  (微量樣品)      

產(chǎn)品編號

產(chǎn)品名稱

包裝

RTU5004

柱式植物葉綠體提取試劑盒

50

產(chǎn)品簡介:

葉綠體(Chloroplast)是質(zhì)體的一種, 是高等植物和一些藻類所特有的能量轉(zhuǎn)換器,是光合作用的反應(yīng)場所。在高等植物中葉綠體為雙凸或平凸透鏡,長徑5~10μm,短徑2~4μm,厚2~3μm。高等植物的葉肉細(xì)胞一般含50~200個葉綠體,可占細(xì)胞質(zhì)的40%,葉綠體的數(shù)目因物種細(xì)胞類型,生態(tài)環(huán)境,生理狀態(tài)而有所不同。葉綠體由葉綠體外被(chloroplast envelope)、類囊體(thylakoid)和基質(zhì)(stroma)三部分組成,含有3種不同的膜:外膜、內(nèi)膜、類囊體膜和3種彼此分開的腔:膜間隙、基質(zhì)和類囊體腔。本公司的植物葉綠體提取試劑盒采用密度梯度離心方法,可以從多種植物中提取高純度的葉綠體。

1. 即用型試劑盒,用戶不需要單獨配制各種溶液。

2. 不需要液氮研磨葉片,可以從50-100 mg材料中提取葉綠體,方便使用。

3. 試劑盒可以用于葉綠體粗提,所得葉綠體含少量其他細(xì)胞器污染,可用于后續(xù)的SDS-PAGE,Western,ELISA和蛋白組分析。也可以用于葉綠體精提,所得葉綠體完整,可用于后續(xù)的光合作用,電子鏈和磷酸化,跨膜轉(zhuǎn)運,體外葉綠體蛋白合成,蛋白定位等研究。還可用于葉綠體膜,基質(zhì),類囊體的提取以及葉綠體DNA和葉綠體RNA純化。

4. 以每次處理0.1 g葉片計算,本產(chǎn)品可使用50次提取,每次能得到20-30 μg葉綠體(葉綠素定量)。

5. 已經(jīng)成功用于擬南芥,綠蘿,菠菜,大豆,萵筍,白菜,煙草和甜菜等植物,還可用于更多植物(可能需要優(yōu)化條件)。

   注:本產(chǎn)品適合于少量葉片(50-100 mg)葉綠體的提取,大量葉片葉綠體提?。看翁幚?0 g葉片)請選擇RTU5001 植物葉綠體提取試劑盒。

貯存及運輸:

4-8℃保存;有效期一年;試劑盒常溫運輸。

產(chǎn)品組成:

產(chǎn)品貨號

產(chǎn)品名稱

包裝

貯存

RTU5004-01

提取緩沖液

25 ml

4-8

RTU5004-02

漂洗緩沖液

100 ml

4-8

RTU5004-03

密度梯度分離試劑

20 ml

4-8

CD-50

離心柱套裝(包含離心柱和2 ml連蓋收集管)

50

RT

YMB-5

塑料研磨棒

5/

RT

 

說明書

一份

-

使用說明:

注意:葉綠體對溫度高度敏感,所以整個操作必須在冰上或者在冷室進行,所用器皿和溶液均需要在4℃預(yù)冷。離心時一定要在4℃進行,離心力以g而不是rpm計算。如果需要研究葉綠體的功能,提取過程還需要在昏暗的光線條件下進行。

需要自備材料:

剪刀;1.5 離心管;低溫離心機。

葉綠體提?。?/b>

1.1 材料預(yù)處理:

實驗前1-2天將植物放在暗室培養(yǎng)以減少葉綠體中淀粉顆粒的形成,否則離心時這些顆粒很容易使葉綠體破裂。葉片在實驗前需先用自來水洗凈,再用蒸餾水淋洗,去掉多余水分。如果葉片采集后不能立即處理,則保存時需要保持葉片濕潤,即使如此,葉片采集后的放置時間也不能超過一天。

1.2 葉片研磨:

1.2.1 50-100 mg新鮮采集植物樣品(葉片,軟莖等),剪成1-3 cm2大小的碎片放入離心柱內(nèi)。

注:樣品質(zhì)量盡量控制在100 mg以內(nèi),有利于后續(xù)充分研磨。

1.2.2 加入0.1 ml 預(yù)冷的提取緩沖液,用塑料研磨棒向下擠壓旋轉(zhuǎn)研磨樣品20-30次(大約用時1-2分鐘),至樣品無可見大塊組織碎片,再補加0.3 ml 提取緩沖液,用吸頭混勻。

注:塑料研磨棒可以水洗后重復(fù)使用。

1.3 離心去雜質(zhì):

蓋好2 ml收集管管蓋,4 2000 g(約4600 rpm)離心 5分鐘。

1.4 粗葉綠體提取:

1.4.1 棄離心柱,吸頭吸棄離心管內(nèi)上清,保留沉淀。

注:如沉淀離心后不實,可以重懸沉淀后再次離心收集沉淀。

1.4.2 沉淀中加入0.1 ml漂洗緩沖液,輕輕重懸,溶液即為葉綠體粗提液。

注:100 mg葉片提取的粗葉綠體,溶于0.1 ml漂洗緩沖液中,葉綠體濃度約為0.6-1 μg Chl/μl(葉綠體濃度測定見步驟1.6),可以將多管葉綠體溶液4℃ 4200 g 離心5分鐘,合并葉綠體沉淀,用漂洗緩沖液將葉綠體濃度調(diào)整為 1 μg Chl/μl(1 mg Chl/ml),分裝為50 μl每只,-80℃貯存。

1.5 精制葉綠體提?。?span>

1.5.1即用型梯度分離液配制:

在干凈的1.5 ml離心管中加入0.4 ml 密度梯度分離試劑和0.6 ml漂洗緩沖液,渦旋徹底混勻。

1.5.2 將步驟1.4.20.1 ml葉綠體粗提液緩慢加入到即用型梯度分離液上方。

1.5.3 44200 g(約6600 rpm)離心10分鐘,小心棄上清,沉淀為精制葉綠體。

1.5.4 在沉淀中加入0.5 ml 漂洗緩沖液,輕柔重懸沉淀。

1.5.5 44200 g(約6600 rpm)離心5分鐘,棄上清,保留沉淀。

1.5.6沉淀中加入0.1 ml漂洗緩沖液,輕輕重懸,溶液即為精制葉綠體。

注:100 mg葉片提取的精制葉綠體,溶于0.1 ml漂洗緩沖液中,葉綠體濃度約為0.3-0.7 μg Chl/μl(葉綠體濃度測定見步驟1.6),可以將多管葉綠體溶液4℃ 4200 g 離心5分鐘,合并葉綠體沉淀,用漂洗緩沖液將葉綠體濃度調(diào)整為 1 μg Chl/μl(1 mg Chl/ml),分裝為50 μl每只,-80℃貯存。

1.6 葉綠素含量測定:

通常葉綠體含量用單位葉綠素(Chl)含量來表示,即x mg Chl/ml 葉綠體懸浮液。

1.6.1 取10 μl 葉綠體懸浮液加入到990 μl 95%乙醇溶液中,混勻。

1.6.2測定OD649和OD665 吸光值,用95%乙醇做空白對照。

1.6.3 根據(jù)以下公式計算葉綠素:

葉綠素濃度(mg/ml)=100×(18.16×OD649+6.63×OD665

100:稀釋倍數(shù)

. 葉綠體的使用:

2.1 葉綠體功能研究:

如果用于完整葉綠體的功能或酶活性研究,初始100 mg樣品分離得到的葉綠體樣品調(diào)整葉綠體濃度為1 μg Chl/μl,50 μl/管分裝, -80℃貯存?zhèn)溆?。不建議長期貯存,盡快使用。

2.2 葉綠體蛋白電泳:

2.2.1葉綠體蛋白變性樣品處理:

2.2.1.1 取50 μl葉綠體溶液(1 μg Chl/μl);

2.2.1.2 4℃ 4200g 離心5分鐘,棄上清,沉淀中加入SDS-PAGE上樣緩沖液(貨號:PL080,PL113,PL121)處理,建議調(diào)整上樣液濃度為0.5 μg/μl;對于多次跨膜蛋白(Multi-pass membrane protein)的變性電泳檢測,樣品建議使用37℃處理30分鐘,不要95℃加熱5分鐘,因為在95℃高溫情況下,多次跨膜蛋白極易聚集形成多聚體,樣品會聚集,WB檢測會表現(xiàn)為比實際蛋白大小更大的分子量;

2.2.1.3 使用SDS-PAGE凝膠(貨號:RTD6132,RTD6116)電泳,每個泳道上樣10-40 μl(5-20 μg)。

2.2.2 葉綠體蛋白BN非變性樣品處理:

2.2.2.1取50 μl葉綠體溶液(1 μg Chl/μl);;

2.2.2.2 4℃ 4200g 離心5分鐘,棄上清,沉淀中加入50 μl 類囊體膜增溶緩沖液,輕柔重懸沉淀,盡量不產(chǎn)生氣泡,冰浴10分鐘;

2.2.2.3 4℃ 16000 g 10分鐘,取上清至一干凈1.5 ml離心管中即為增溶后葉綠體蛋白溶液(小心不要吸取沉淀),此時得到的葉綠體蛋白濃度為1 μg/μl,其中去垢劑DDM(n-Dodecyl β-D-maltoside,β-DM, n-十二烷基-β-D-麥芽糖苷)終濃度為2%;

2.2.2.4 葉綠體蛋白溶液中加入1/10體積類囊體膜上樣緩沖液(10×),使用BN凝膠電泳(貨號:RTD6139,RTD6140),每個泳道上樣5-20 μg。

2.2.3 葉綠體蛋白等電聚焦樣品處理(2D凝膠第一維電泳):

建議葉綠體沉淀中使用溶解液:7 M尿素,2 M硫脲,2%CHAPS,20 mM DTT(自備,試劑盒不提供)。

實驗示例:


程序:取0.1克新鮮綠蘿葉片加入到離心柱內(nèi),加入0.1 ml提取緩沖液,研磨20次,再加入0.3 ml提取緩沖液(平行做6管);4度 2000g 離心5分鐘;棄上清,沉淀中加入0.1ml漂洗緩沖液,合并6管得到0.6 ml粗葉綠體,保留0.2ml粗葉綠體。取0.1ml粗葉綠體加到1ml即用型梯度分離液上層(0.4 ml密度梯度分離試劑加0.6ml漂洗緩沖液),平行做4管;4度 4200g 離心10分鐘,棄上清,沉淀中加入0.5ml漂洗液清洗一次,4度 4200g 離心5分鐘,4管精制葉綠體沉淀合并收集于0.1ml漂洗液中。用乙醇方法測定葉綠體濃度,調(diào)整粗葉綠體和精制葉綠體濃度均為1μg Chl/μl;取50μl葉綠體溶液,離心,沉淀中加入50 μl類囊體膜增溶緩沖液,冰浴10分鐘,4度 16000g 離心10分鐘取上清,加入1/10體積類囊體膜上樣緩沖液(10×),此時葉綠體蛋白濃度為1μg/μl,上樣10 μl和20 μl。

電泳:RTD6138-0312  3-12%BN膠,1×BN buffer+0.02%G-250,200V 15-3.5mA 50 min

更換1×無色BN buffer 200V繼續(xù)電泳,時間共103 min,F(xiàn)astBlue蛋白染色液染色30分鐘。


 
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